一、不同培养基对马铃薯试管微型薯的诱导（论文文献综述）
金磊[1]（2021）在《氮素水平对3个马铃薯新品种试管苗和试管薯生长的影响》文中研究说明
张紫娟[2]（2019）在《马铃薯高效离体再生体系构建及试管薯遗传转化的优化》文中认为马铃薯（Solanum tuberosum L.）为粮菜兼用型植物,市场需求量大。然而,马铃薯市场仍面临着育种水平较低、优质种薯供应不足、产业化生产水平仍需提高等问题。为此,本研究开展了马铃薯的离体再生与遗传转化研究,以期为其新品种培育及规模化生产等难题的解决奠定基础。本研究以马铃薯品种“大西洋”、“克新23”、“尤金”为材料,建立并优化了茎段、叶片、试管薯、大田薯薯芽及薯块离体再生体系,并以马铃薯品种“大西洋”的试管薯切片为受体材料,对其进行了遗传转化研究。在离体再生体系构建过程中,研究了不同植物激素浓度及其配比、不同消毒方法对不同起始试材离体再生过程的影响。研究发现:1、不同外植体的最佳不定芽诱导培养基分别为MS+3 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+1.5 mg/L ZT（茎段直接诱导）、MS+2mg/L 6-BA+0.6 mg/L NAA+2 mg/L ZT（茎段间接诱导）、MS+3 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+2 mg/L GA3（叶片直接诱导）、MS+2 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+3 mg/L GA3（叶片间接诱导）、MS+2 mg/L ZT+1.5 mg/L IAA+1 mg/L 6-BA（试管薯）、MS+2mg/L 6-BA+0.8 mg/L NAA（大田薯薯芽）、MS+3 mg/L 6-BA+2.5 mg/L NAA（大田薯薯块）;2、最佳的不定芽伸长培养基为MS+1.5 mg/L GA3+1.5 mg/L ZT+0.5 mg/L NAA,其伸长率可达93.47%,不定芽的均伸长长度可达2.46 cm;3、不定根诱导的最佳方法为MS+0.01 mg/L EBR+0.1 mg/L NAA,其生根频率约100%;4、大田薯薯芽先用0.1%升汞浸泡8 min,再用10%次氯酸钠溶液浸泡3 min,消毒效果最好,无菌率为95.27%;大田薯薯块只用0.1%升汞浸泡13 min,无菌率可达75.98%。以“大西洋”试管薯切片为受体材料,研究了影响农杆菌介导的部分基本参数对马铃薯遗传转化的影响,建立了试管薯切片的遗传转化体系。研究发现:适宜的乙酰丁香酮（AS）浓度（50μmol/L）、菌液浓度(OD600为0.5)、侵染时间（5 min）、共培养时间（3 d）均能有效提高试管薯切片的转化频率。应用该转化体系成功获得了马铃薯的转基因抗性苗,抗性芽获得率约为43.33%,转化效率约为32.67%。
戴雅婷,刘广晶,吕文霞,裴燕敏,李璐,武建华,李燕,邸星,于冬梅,李文卿[3]（2018）在《马铃薯试管薯诱导研究概述》文中进行了进一步梳理马铃薯试管苗的生长及试管薯的形成受多种因素共同调控。文章概述了外源激素、不同浓度MS培养基对马铃薯试管苗生长以及外源激素、培养基类型、光周期对马铃薯试管薯形成的影响。为进一步研究马铃薯脱毒微型薯技术提供理论依据,对提高马铃薯产量和质量,以及马铃薯微型薯的生产实践具有非常重要的现实意义。
赵恢[4]（2018）在《马铃薯种子实生苗培育体系建立及茎尖脱毒培养条件优化》文中提出
冯璐[5]（2017）在《植物生长物质对新品种马铃薯试管苗生长及微型薯诱导的影响》文中认为本试验以紫马铃薯、粉马铃薯两个新品种为材料,以植物组织培养技术为手段,通过对不同植物生长物质（即植物激素、植物生长延缓剂）浓度的调控,研究单因素、多因素的植物生长物质对新品种马铃薯茎尖培养、继代增殖、生根壮苗及微型薯诱导的影响,探索紫、粉马铃薯试管苗生长、微型薯形成的最佳培养基配方和培养条件,以筛选出紫、粉马铃薯快繁及微型薯诱导的最适配比条件。植物激素对紫、粉马铃薯试管苗影响的研究。结果表明:IBA、NAA均促进紫、粉马铃薯试管苗根的生长,且IBA优于NAA,IBA1.0mg.L-1对新品种试管苗的根系作用明显;NAA>0.5mg.L-1对两个品种根系的生长均不利;添加2,4-D（0.52.0 mg.L-1）促使新品种马铃薯试管苗株高增加、茎纤细、根系极不发达,产生乳白色、块状愈伤组织;0.5mg.L-1TDZ或ZT可促进其不定芽产生,利于芽增殖;单独添加6-BA无不定芽产生,且造成两个品种试管苗不生根、分枝少、苗矮弱。生长素IBA、NAA分别与6-BA配比,以 MS+IBA 1.0 mg.L-1+6-BA 1.0 mg.L-1、MS+NAA 0.5 mg.L-1+6-BA 0.2 mg.L-1 培养紫、粉马铃薯试管苗,叶片展开,叶色加深,试管苗长势良好。植物生长延缓剂PP333、CCC、Pix对两个新品种马铃薯试管苗壮苗的研究。结果表明:添加一定浓度的PP333时,紫马铃薯试管苗适宜的浓度为0.0200.025 mg.L-1,粉马铃薯适合0.020 mg.L-1;CCC处理两个品种马铃薯的试管苗,适宜浓度均在0.06 mg.L-1,但影响效应不同,生理反应各异;Pix对紫马铃薯试管苗壮苗的适宜浓度为200mg.L-1,而粉马铃薯适宜100 mg.L-1。三种生长延缓剂对紫、粉马铃薯试管苗壮苗均有利,表现为试管苗健壮、抗氧化酶活性增强,但作用效果PP333>CCC>Pix。蔗糖浓度的改变对两个新品种马铃薯试管苗壮苗的研究。结果表明:紫马铃薯比粉马铃薯适应蔗糖浓度,表型上以MS+8%蔗糖培养紫马铃薯植株健壮,而粉马铃薯则以MS+6%蔗糖为宜。当加入PP333时,以MS+PP333 0.02 mg.L-1+4%蔗糖的培养基培养两个新品种试管苗,壮苗效果最佳,且降低蔗糖的用量,利于培养基渗透压的调节。培养条件的改变对紫、粉马铃薯微型薯诱导的研究。结果表明:诱导微型薯的培养条件以弱光下温度（20±2）°C,光照强度12～13μmol.m-2.s-1,培养14d后黑暗最佳。单一蔗糖浓度改变来诱导微型薯,紫马铃薯品种适合10%蔗糖,粉马铃薯适合8%蔗糖。激素配比时,为保证结薯率、结薯数、结薯质量,紫马铃薯适合MS+6-BA3.0mg.L-1+NAA 0.1 mg.L-1蔗糖6%诱导微型薯,粉马铃薯适合MS+6-BA 1.0 mg.L-1+NAA 0.3 mg.L-1+蔗糖6%。PP333、CCC、Pix三种延缓剂可改善微型薯的质量,紫马铃薯适宜的浓度分别为0.03 mg·L-1、0.3 mg.L-1、125 mg·L-1,且作用效果CCC>Pix>PP333;粉马铃薯适宜的浓度分别为0.05 mg·L-1、0.3 mg·L-1、250mg·L-1,且作用效果PP333>CCC>Pix。将P333与 6-BA、NAA 配比时,以 MS+PP333 0.01 mg.L-1+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA2.0 mg.L-1+蔗糖6%对两个品种的诱导效果最佳。
马爽[6]（2017）在《我国马铃薯微型薯诱导研究进展》文中指出概述了我国马铃薯微型薯诱导近10年的激素添加试验结果,对马铃薯试管苗和微型薯培养的营养基质、温度条件、光照方式、激素类别和浓度使用情况以及块茎形成基因进行了总结,为研究一套完整的马铃薯微型薯诱导技术提供理论指导。
程永芳,张丽,宋玉霞[7]（2016）在《马铃薯高效遗传转化受体体系的建立》文中提出以4个马铃薯（Solanum tuberosum L.）栽培种为材料,对其叶片、茎段和试管薯3种外植体再生体系进行研究,筛选与优化马铃薯遗传转化的受体材料和条件,建立马铃薯高效遗传转化受体体系。结果表明:茎段较叶片愈伤组织形成速度更快、诱导率更高。其中,‘陇薯3号’愈伤组织分化效果最佳,分化率和出苗率分别达100%和175.0%。在添加1.0mg·L-1ZT+1.0mg·L-1 IAA+0.5mg·L-16-BA+0.2mg·L-1 GA的MS培养基中,4个品种的试管薯均可通过直接分化再生系统分化成苗。其中,以‘青薯168’试管薯薯片出苗率最高（110.0%）。验证了试管薯作为转化受体,受基因型的影响小,转化周期短,是马铃薯遗传转化的最佳材料,进一步建立试管薯繁育及再生体系,为马铃薯遗传转化奠定良好的基础。
王小国[8]（2015）在《紫色马铃薯试管苗的培养及微型薯的诱导》文中研究表明为促进紫色马铃薯产业的更好发展,以MS为基本培养基,黑金刚马铃薯块茎催芽后的芽体为材料,对外植体的消毒方式和微型薯诱导的影响因素进行了分析。结果表明:先用75%酒精消毒30s,无菌水冲洗1次,再用0.1%升汞消毒78min,无菌水冲洗35次为外植体较好的消毒方式;正交试验结果表明9种培养基对试管薯的诱导结果差异较为明显,除添加3%蔗糖的3种培养基没有诱导出微型薯外,其余培养基均能诱导出微型薯,培养基MS+蔗糖7%+6-BA1.0mg·L-1+KH2PO4510mg·L-1+NH4NO3550mg·L-1上微型薯诱导率最高,为83.33%,MS+蔗糖7%+6-BA 5.0 mg·L-1+KH2PO4 170 mg·L-1+NH4NO31 650mg·L-1的培养基上诱导的微型薯直径最大。
李爽,张雪,韩玉珠[9]（2014）在《马铃薯试管薯诱导的研究现状及进展》文中研究指明马铃薯试管薯具有种性好、繁殖速度快、休眠期长、体积小、质量轻、利于保存和种薯交流的特点,是促进马铃薯脱毒种薯繁殖的有效措施。对马铃薯试管苗诱导试管薯的基因型、培养基类型、培养条件、营养成分等影响因素进行了综述,为马铃薯育种工作者对试管薯的诱导提供理论参考。
杨莎,邓玉萍,林萱,宋勇[10]（2013）在《马铃薯试管苗培养及试管薯诱导研究进展》文中研究表明脱毒马铃薯试管苗的扦插快繁技术是近年来采取的一项新型、实施较为快捷的实用手段,应用组织培养技术推广脱毒种薯,不但能够获得无病毒苗,而且缩短无病毒薯的生长周期,还能显着提高马铃薯产量和质量。文章综述常见的与试管苗壮苗相关的因素,以及不同的光照条件、外源激素浓度、蔗糖浓度对不同品种马铃薯试管薯诱导形成的影响。
二、不同培养基对马铃薯试管微型薯的诱导（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、不同培养基对马铃薯试管微型薯的诱导（论文提纲范文）
（2）马铃薯高效离体再生体系构建及试管薯遗传转化的优化（论文提纲范文）
| 摘要 |
| 一 文献综述 |
| 1 马铃薯离体再生研究进展 |
| 1.1 外植体的类型 |
| 1.2 愈伤组织诱导 |
| 1.3 不定芽的诱导及伸长 |
| 1.4 生根 |
| 1.5 存在的问题 |
| 2 马铃薯遗传转化研究进展 |
| 3 研究意义和目的 |
| 二 马铃薯高效离体再生体系构建 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 茎段不定芽诱导研究 |
| 1.1.1 试验材料 |
| 1.1.2 培养基与培养条件 |
| 1.1.3 直接不定芽诱导 |
| 1.1.4 间接不定芽诱导 |
| 1.2 叶片不定芽诱导研究 |
| 1.2.1 试验材料 |
| 1.2.2 直接不定芽诱导 |
| 1.2.3 间接不定芽诱导 |
| 1.3 试管薯不定芽诱导研究 |
| 1.3.1 试验材料 |
| 1.3.2 试管薯诱导 |
| 1.3.3 不定芽诱导 |
| 1.4 大田薯薯芽不定芽诱导研究 |
| 1.4.1 试验材料 |
| 1.4.2 无菌外植体的获得 |
| 1.4.3 不定芽诱导 |
| 1.5 大田薯薯块不定芽诱导研究 |
| 1.5.1 试验材料 |
| 1.5.2 无菌外植体的获得 |
| 1.5.3 不定芽诱导 |
| 1.6 不定芽伸长研究 |
| 1.7 不定根诱导研究 |
| 1.8 炼苗与移栽 |
| 1.9 数据统计与方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 茎段不定芽诱导研究 |
| 2.1.1 直接不定芽诱导 |
| 2.1.2 间接不定芽诱导 |
| 2.2 叶片不定芽诱导研究 |
| 2.2.1 直接不定芽诱导 |
| 2.2.2 间接不定芽诱导 |
| 2.3 试管薯不定芽诱导研究 |
| 2.3.1 试管薯诱导 |
| 2.3.2 试管薯不定芽诱导 |
| 2.4 大田薯薯芽不定芽诱导研究 |
| 2.4.1 无菌外植体的获得 |
| 2.4.2 薯芽不定芽诱导 |
| 2.5 大田薯薯块不定芽诱导研究 |
| 2.5.1 无菌外植体的获得 |
| 2.5.2 薯块不定芽诱导 |
| 2.6 不定芽伸长研究 |
| 2.7 不定根诱导研究 |
| 2.8 炼苗与移栽 |
| 3 讨论与结论 |
| 三 试管薯遗传转化的优化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料与基本培养基 |
| 1.2 质粒载体与筛选标记 |
| 1.3 抗生素敏感性实验和筛选方法 |
| 1.4 遗传转化步骤及基本技术参数探索 |
| 1.4.1 乙酰丁香酮的影响 |
| 1.4.2 菌液浓度和侵染时间的影响 |
| 1.4.3 共培养时间的影响 |
| 1.5 PCR检测再生苗的阳性率 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 抗生素对试管薯切片再生性能的影响及其抑菌效果 |
| 2.1.1 筛选抗生素对试管薯切片再生性能的影响 |
| 2.1.2 抑菌抗生素对试管薯切片再生性能的影响及其抑菌效果 |
| 2.2 遗传转化步骤及基本技术参数探索 |
| 2.2.1 乙酰丁香酮的影响 |
| 2.2.2 菌液浓度和侵染时间的影响 |
| 2.2.3 共培养时间的影响 |
| 2.3 试管薯切片遗传转化体系的建立 |
| 2.3.1 试管薯切片抗性芽筛选培养 |
| 2.3.2 抗性芽生根 |
| 2.3.3 阳性检测 |
| 3 讨论与结论 |
| 四 结论与展望 |
| 参考文献 |
| Abstract |
| 作者在攻读硕士学位期间公开发表的论文 |
| 致谢 |
（5）植物生长物质对新品种马铃薯试管苗生长及微型薯诱导的影响（论文提纲范文）
| 摘要 |
| 1 前言 |
| 1.1 马铃薯及马铃薯产业的概述 |
| 1.2 马铃薯组织培养的研究现状 |
| 1.2.1 试管种苗 |
| 1.2.2 微型种薯生产 |
| 1.3 彩色马铃薯的研究应用 |
| 1.3.1 彩色马铃薯的应用价值 |
| 1.3.2 彩色马铃薯的研究进展 |
| 1.4 本课题研究的目的及意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 试验材料与试剂 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 获取无菌试管苗 |
| 2.2.2 接种与培养 |
| 2.3 不同植物激素对紫、粉马铃薯试管苗继代培养的试验设计 |
| 2.3.1 单因子生长素影响的试验设计 |
| 2.3.2 单因子细胞分裂素影响的试验设计 |
| 2.3.3 生长素与细胞分裂素配比的试验设计 |
| 2.4 不同植物生长延缓剂对紫、粉马铃薯试管苗壮苗的试验设计 |
| 2.4.1 单一生长延缓剂对试管苗壮苗的试验设计 |
| 2.4.2 PP_(333)对试管苗保存的试验设计 |
| 2.5 蔗糖对试管苗壮苗的试验设计 |
| 2.6 新品种马铃薯微型薯诱导的试验设计 |
| 2.6.1 不同光照强度、温度下紫、粉马铃薯微型薯诱导的试验设计 |
| 2.6.2 蔗糖浓度对微型薯诱导的试验设计 |
| 2.6.3 不同激素配比对微型薯诱导的试验设计 |
| 2.6.4 不同植物生长延缓剂对微型薯诱导的试验设计 |
| 2.6.5 PP_(333)与不同激素组合的微型薯诱导试验设计 |
| 2.7 紫、粉马铃薯微型薯的培养与栽培 |
| 2.8 试验指标测定 |
| 2.9 数据统计 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 不同植物激素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 3.1.1 生长素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 3.1.2 细胞分裂素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 3.1.3 生长素与6-BA配比对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 3.2 不同植物生长延缓剂对紫、粉马铃薯试管苗壮苗的影响 |
| 3.2.1 PP_(333)对试管苗壮苗的影响 |
| 3.2.2 CCC对试管苗壮苗的影响 |
| 3.2.3 Pix对试管苗壮苗的影响 |
| 3.2.4 PP_(333)对试管苗的保存 |
| 3.3 蔗糖对紫、粉马铃薯试管苗壮苗的影响 |
| 3.3.1 不同蔗糖浓度对试管苗壮苗的影响 |
| 3.3.2 PP_(333)与不同蔗糖浓度配比对试管苗壮苗的影响 |
| 3.4 不同培养条件对紫、粉马铃薯微型薯诱导的影响 |
| 3.4.1 光照强度、温度对微型薯诱导的影响 |
| 3.4.2 不同蔗糖浓度对微型薯诱导的影响 |
| 3.4.3 不同激素配比对微型薯诱导的影响 |
| 3.4.4 不同植物生长延缓剂对微型薯诱导的影响 |
| 3.4.5 PP_(333)与不同激素组合对微型薯诱导的影响 |
| 3.5 对紫、粉马铃薯微型薯的培养 |
| 4 讨论 |
| 4.1 不同植物激素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 4.1.1 生长素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 4.1.2 细胞分裂素对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 4.1.3 6-BA与不同生长素配比对紫、粉马铃薯试管苗的影响 |
| 4.2 不同植物生长延缓剂对紫、粉马铃薯壮苗的影响 |
| 4.2.1 多效唑PP_(333)对紫、粉马铃薯试管苗壮苗及保存的影响 |
| 4.2.2 矮壮素CCC对紫、粉马铃薯试管苗壮苗的影响 |
| 4.2.3 缩节胺Pix对紫、粉马铃薯试管苗壮苗的影响 |
| 4.3 不同蔗糖浓度对紫、粉马铃薯壮苗的影响 |
| 4.4 不同培养条件对紫、粉马铃薯微型薯诱导的影响 |
| 4.5 紫、粉马铃薯微型薯的培养 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| Abstract |
| 附录 |
| 致谢 |
（6）我国马铃薯微型薯诱导研究进展（论文提纲范文）
| 1 试管苗培养 |
| 1.1 培养基使用类型 |
| 1.2 接种物的应用状况 |
| 1.3 培养条件和培养时间的应用状况 |
| 1.4 试管薯的苗龄诱导情况 |
| 2 试管微型薯诱导 |
| 2.1 培养基使用情况 |
| 2.1.1 培养基中添加植物生长调节剂的应用状况 |
| 2.1.2 碳源使用状况 |
| 2.2 温度与光照的应用状况 |
| 2.3 影响马铃薯试管苗的结薯基因 |
| 3 试管薯的收货和保存 |
（7）马铃薯高效遗传转化受体体系的建立（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 试验材料的繁殖与壮苗 |
| 1.2.2 叶片及茎段组织培养体系的建立 |
| 1.2.3 试管薯诱导结薯 |
| 1.2.4 试管薯薯片分化 |
| 1.3 数据处理及分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 茎段和叶片愈伤组织的诱导 |
| 2.2 茎段愈伤组织分化及出苗 |
| 2.3 培养方法对马铃薯试管薯诱导的影响 |
| 2.4 2种培养方法对马铃薯试管薯诱导的比较 |
| 2.5 试管薯薯片出苗 |
| 3 讨论 |
（8）紫色马铃薯试管苗的培养及微型薯的诱导（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 黑土豆块茎催芽处理 |
| 1.2.2 初代培养 |
| 1.2.3 不定芽的诱导 |
| 1.2.4微型薯的诱导 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同消毒方法对外植体的影响 |
| 2.2 试管苗生长情况 |
| 2.3 微型薯的诱导 |
| 3 结论与讨论 |
（9）马铃薯试管薯诱导的研究现状及进展（论文提纲范文）
| 1 基因型对试管薯诱导的影响 |
| 2 培养基类型对试管薯诱导的影响 |
| 3 培养条件对试管薯诱导的影响 |
| 3.1 温度 |
| 3.2 光照 |
| 4 营养成分对试管薯诱导的影响 |
| 4.1 外源激素 |
| 4.2 碳源 |
| 5 小结与展望 |
（10）马铃薯试管苗培养及试管薯诱导研究进展（论文提纲范文）
| 1 马铃薯试管苗壮苗研究进展 |
| 1.1 培养基类型对马铃薯试管苗生长的影响 |
| 1.2 光照条件对马铃薯试管苗生长的影响 |
| 1.3 外源激素对马铃薯试管苗生长的影响 |
| 2 马铃薯试管薯培养研究进展 |
| 2.1 外源激素对马铃薯试管薯形成的影响 |
| 2.2 光照对马铃薯试管薯形成的影响 |
| 2.3 蔗糖浓度对马铃薯试管薯形成的影响 |
四、不同培养基对马铃薯试管微型薯的诱导（论文参考文献）
- [1]氮素水平对3个马铃薯新品种试管苗和试管薯生长的影响[D]. 金磊. 东北农业大学, 2021
- [2]马铃薯高效离体再生体系构建及试管薯遗传转化的优化[D]. 张紫娟. 山西农业大学, 2019(07)
- [3]马铃薯试管薯诱导研究概述[A]. 戴雅婷,刘广晶,吕文霞,裴燕敏,李璐,武建华,李燕,邸星,于冬梅,李文卿. 马铃薯产业与脱贫攻坚（2018）, 2018
- [4]马铃薯种子实生苗培育体系建立及茎尖脱毒培养条件优化[D]. 赵恢. 河北科技师范学院, 2018
- [5]植物生长物质对新品种马铃薯试管苗生长及微型薯诱导的影响[D]. 冯璐. 山西农业大学, 2017(01)
- [6]我国马铃薯微型薯诱导研究进展[J]. 马爽. 黑龙江农业科学, 2017(04)
- [7]马铃薯高效遗传转化受体体系的建立[J]. 程永芳,张丽,宋玉霞. 西北农业学报, 2016(09)
- [8]紫色马铃薯试管苗的培养及微型薯的诱导[J]. 王小国. 黑龙江农业科学, 2015(06)
- [9]马铃薯试管薯诱导的研究现状及进展[J]. 李爽,张雪,韩玉珠. 长江蔬菜, 2014(14)
- [10]马铃薯试管苗培养及试管薯诱导研究进展[J]. 杨莎,邓玉萍,林萱,宋勇. 中国园艺文摘, 2013(01)